流行病已成为制约养猪业发展的主要瓶颈之一，尤其是猪瘟、蓝耳病（PRRS）、伪狂犬病（PRV）等严重传染病。近年来，由于种种原因，生猪养殖业疾病防治工作面临严峻挑战。猪的饲养密度越来越大，猪的抵抗力逐渐下降，导致猪病越来越复杂，给诊治带来很多麻烦。为了解猪场重大疫病的免疫水平或感染状况，及时发现疫病风险，为重大疫病预警、防控提供理论依据，更好地指导生猪生产，养猪场通常定期进行抗体检测。本文江苏永康农牧科技有限公司对猪瘟、蓝耳病和伪狂犬病进行了血清学系统检测，并对结果进行了分析。现报告如下，供读者参考。
一、材料与方法
1.1 猪场选择
江苏永康农牧科技有限公司共有母猪1500头。实行单点饲养管理模式，自繁自养，全进全出。仔猪3周龄断奶，断奶当天转入保育舍，10周龄转入育肥舍。猪场生产业绩非常好，3年内没有发生过重大传染病。猪场位于江苏省常州市竹林镇，远离高密度养殖区，具有良好的自然防疫条件。
猪场主要疫苗免疫程序如下： 2009年开始使用进口PRRSV弱毒疫苗（VR2332株）；进口猪伪狂犬病基因缺失疫苗（Bartha-K61株）；高效猪瘟细胞疫苗。
PRRS免疫程序：母猪和公猪一般每年免疫3次，后备母猪配种前免疫2次，仔猪14日龄免疫，免疫剂量为1头/次。
猪瘟免疫方案：母猪哺乳期随胎免疫，公猪一般每年免疫3次，后备母猪配种前免疫2次，仔猪4周龄和8周龄免疫2次，免疫剂量为1头服务/时间。
PRV免疫程序：母猪和公猪每年免疫3次，后备母猪配种前免疫2次，仔猪9周龄免疫1次，免疫剂量为1头/次。
1.2 抽样方案
随机采集不同阶段猪的血液，每个阶段采血5份。采血后分离血清送合作实验室检测。采血方案见表1。猪场为种猪场，公猪更新率较高，故本次采血公猪年龄均为2年以内的仔猪。
1.3 抗体检测操作方法
检测试剂盒均为美国IDEXX公司生产，操作方法和结果判断标准参照试剂盒说明书。
表1 猪场各猪群血清采集方案（部分）
2. 结果
2.1 猪瘟检测结果与分析
2.1.1 猪瘟（CSF）抗体检测结果（阻断率40%为阳性）
猪瘟（CSF）抗体检测结果见图1-4。
2.1.2猪瘟抗体分析
结合图1至图4分析如下。
种畜群
经产母猪和公猪猪瘟抗体阳性率为100%，刚进入隔离舍的后备母猪抗体阳性率为80%，所有种猪群平均抗体阳性率为98.7%，符合我国农业部要求。在强制疫病免疫程序中，种猪群抗体阳性率为90.0%，猪瘟抗体在种猪群中分散度较小（4%26%），表明抗体的保护作用明显。对种猪阶段的猪瘟非常好。
图1 CSF抗体阻断率检测结果
图2 不同阶段猪瘟抗体平均值及离散度
图3 各阶段猪瘟抗体阳性率
图4 猪瘟抗体阻断率分布
从猪瘟抗体阻断率分布范围可以看出，高胎龄母猪和低胎龄母猪（包括后备母猪和仔猪）的抗体阻断率低于中龄母猪。胎次母猪。可能是由于低胎次母猪接种CSF的次数相对较少，因此产生的CSF抗体水平较低。高胎龄母猪抗体阻断率低，可能是随着猪瘟疫苗使用年限的增加免疫次数增多，导致机体对猪产生一定程度的免疫麻痹发烧疫苗，而高胎龄母猪自身健康状况的恶化，降低了其对猪瘟疫苗的免疫反应。不同妊娠阶段和泌乳母猪的CSF抗体阻断率无显着差异。
商品猪
商品猪群猪瘟抗体阳性率为87.5%，满足我国农业部动物疫病强制免疫规划中商品猪群合格率70.0%的要求。 38%)，3周龄和7周龄仔猪抗体阳性率分别为80%和40%，3周龄和7周龄仔猪抗体阻断率均低于65% .阳性率为100%，但80%的猪抗体阻断率低于65%。 10周龄后，猪瘟抗体阻断率逐渐升高。结合商品猪猪瘟免疫方案，即4周龄首免、8周龄二免，首免后猪瘟抗体阻断率无明显增加，抗体二免后猪瘟抗体阻断率逐渐升高，本猪场商品猪群猪瘟抗体阻断率变化趋势属正常现象。同时也提醒我们，猪瘟疫苗经过二次免疫后能产生更好的保护作用，第一次免疫与第二次免疫的间隔时间不宜超过5周。
2.2 PRRSV检测结果及分析
2.2.1 PRRS抗体检测结果（0.4为阳性） PRRS抗体检测结果见图5-8。
图5 PRRS抗体检测结果
图6 各阶段猪PRRS抗体平均值及分布情况
图7 各阶段猪PRRS抗体阳性率
图8 PRRS抗体值分布
2.2.2 PRRS抗体分析
IDEXX PRRSV 抗体检测试剂盒使用PRRS 病毒的核衣壳蛋白（N 蛋白）作为包被抗原。 N蛋白不能诱导机体产生针对病毒的中和抗体，因此不适合监测疫苗的免疫保护作用，但可以在一定程度上判断猪PRRS病毒的免疫力或感染状况，应用广泛因其保存性好、灵敏度高、结果重现性好。结合图5图8分析如下。
种畜群
种猪群PRRS抗体阳性率为77.3%，其中7胎及以上母猪阳性率为53.%，种猪群抗体值均小于2.5，表明繁殖群
群内PRRSV的感染压力很低。同时，青年公猪、后备母猪、低胎龄母猪的抗体值要明显大于高胎龄母猪。这种现象在PRRSV稳定、长期使用进口PRRSV疫苗的猪场内经常可以见到，随着猪只免疫PRRSV疫苗的次数不断增加，PRRS抗体值逐渐降低，但猪群的PRRSV感染压力越来越小。在离散度方面，7胎及以上胎龄母猪的抗体离散度最高，但该阶段母猪的抗体值均低于1.5。这提示我们在解读抗体离散度的时候，需要考虑到具体抗体值的大小；与高抗体值相比，在低抗体值水平下，相同的数值差异，会导致离散度明显增加。⑵商品猪群
与3周龄相比，7周龄仔猪抗体平均值、抗体阳性率均有所增加，10周龄后出现下降的趋势，但13周龄后又出现上升趋势。10周龄以后抗体平均值均在2.1以内，商品猪群中只有2个样本的抗体值大于2.5，分别是7周龄和25周龄的两个样本（抗体值分别为2.59和2.72）。结合猪场的PRRSV免疫程序，仔猪14日龄免疫某进口PRRSV弱毒疫苗（VR2332毒株），说明7周龄抗体值增加是疫苗免疫后的正常反应，13周龄时抗体值增加，但抗体值均在2.0左右，说明10～13周龄猪场内存在一定的野毒感染，但感染的压力很小。
2.3 PRV检测结果及分析
2.3.1 猪伪狂犬病（PRV）gE抗体检测结果（≤0.6为阳性）
PRV-gE抗体检测结果见图9。
图9 PRV-gE抗体检测结果
图10 PRV-gB抗体检测结果
图11 PRV-gB抗体离散度、平均值
图12 PRV-gB抗体阳性率
图13 PRV-gB抗体分布
2.3.2 猪伪狂犬病（PRV）gB抗体检测结果（≤0.6为阳性）
PRV-gB抗体检测结果见图10～13。
2.3.3 PRV gE、gB抗体分析
⑴gE抗体检测显示该猪场为猪伪狂犬野毒阴性场。
⑵种猪群。gB抗体检测结果显示，经产母猪群及已经结束隔离的后备母猪gB抗体阳性率为100%，同时S/N值均在0.1以下，说明该猪场后备母猪在配种之前经过两次免疫PRV疫苗、经产母猪多次免疫PRV疫苗以后可以产生很好的gB抗体。青年公猪、刚进入隔离舍的后备母猪gB抗体阳性率相对较差，可能与免疫次数相对较少有关。这提示我们经过多次免疫后，猪群可以产生较好的PRV保护水平，同时也提示我们需要加强针对后备种猪群的生物安全，提高免疫频率。
⑶商品猪群。与3周龄相比，7周龄仔猪的gB抗体水平明显降低，说明母源抗体的保护力在逐渐消失。10周龄后gB抗体逐渐增加，说明9周龄PRV免疫已经产生作用。25周龄时gB水平降到最低，说明疫苗的保护力在这阶段已经很弱，提示我们肥猪群是猪场内PRV野毒的突破口，猪场需要根据自身情况加强肥猪群的生物安全、增加商品猪群的免疫密度，提高gB抗体水平，防止野毒的感染。
3、讨论
通过对该猪场猪瘟、PRRS、伪狂犬相关抗体的系统分析，可以得出，这三种疾病在该猪场得到了很好的防控。同时根据抗体的变化曲线，我们也可以得到以下规律。
⑴后备种猪群由于疫苗免疫的密度较小，抗体水平通常较差，在猪场中属于高风险群体。
⑵不同妊娠阶段、哺乳期母猪群在抗体水平上无明显差异。
⑶在解读抗体离散度的时候，需要考虑到具体抗体值的大小，与高抗体值相比，抗体值越低，相同的数值差异产生的离散度明显增加。
⑷商品猪群猪瘟需要免疫两次以后，方可得到较强的免疫保护，在制定猪瘟的免疫程序时，需要根据猪瘟的母源抗体水平确定合理的首免时间，在首免后的5周内进行2免。
在没有PRRSV重复感染的PRRSV稳定猪场，如免疫进口PRRSV弱毒疫苗（VR2332毒株），种猪群随着免疫次数的增加，N蛋白抗体的水平会逐渐下降。
⑸肥猪阶段是PRV的感染窗口，需要根据猪场的具体情况，调整商品猪群PRV的免疫程序，提高gB抗体的水平，并加强肥猪阶段的生物安全。
4、小结
在猪场疾病风险逐渐增大的时代，猪场更需要重视疫病的检查和监测。设计科学合理的、能够反映猪群实际状况的采血方案，采血后进行重大疫病抗体的检测并对结果进行科学的分析，以便及时发现并科学处理猪群中潜在的疫病风险，提高猪群的健康状况，将猪病尤其是重大疫病扼杀在“摇篮”之中，实现猪场的健康可持续发展。
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