猪场猪瘟抗体合格率随着胎次增加而呈现降低的趋势

猪瘟（Classical Swine Fever，CSF）是由猪瘟病毒引起的猪的一种急性、严重的接触性传染病。 1956年，周太冲等研制成功猪瘟中国株（C株）兔样弱毒疫苗，是我国唯一使用过的疫苗株。而且这个疫苗是国际上公认的最好的疫苗。欧亚大陆多国采用C系列弱毒疫苗有效控制猪瘟疫情。因此，免疫接种仍是防控猪瘟的主要措施。减毒疫苗用于控制猪瘟。这种以预防为主的控制政策大大降低了猪瘟的感染率和发病率。但近年来，随着养殖业的发展，生猪养殖规模的扩大和养殖技术水平的提高，该病有严重发生或流行的迹象。不少猪场合理使用了猪瘟疫苗，但由于免疫力失效，猪瘟仍呈散发性，病程由急转慢性，有持续感染、胎盘感染、新生儿先天感染等。仔猪，表现为死亡、耐受或无症状的感染猪。

母猪持续感染和仔猪胎盘感染是导致猪瘟免疫失效的最重要原因。国家猪瘟参考实验室首次成功利用野猪瘟病毒人工复制持续感染猪瘟病毒的母猪动物模型，并证实母猪可携带病毒750天，甚至携带和携带病毒。终生传播病毒。这些母猪产下的仔猪大多是具有先天免疫耐受性的猪。胎盘感染后存活下来的仔猪往往会持续感染，不断对外界环境进行排毒，自身不会出现任何临床症状，导致猪瘟在猪场蔓延。在此过程中形成反复的恶性循环，即猪瘟亚临床感染、胎盘感染、母猪繁殖障碍、仔猪感染、后备母猪亚临床感染、猪亚临床感染，使感染猪的感染率为3 %~33%在临床实践中。研究还表明，低水平的母体抗体不能抵抗野生脑脊液感染。因此，及时监测母源抗体滴度，根据群体抗体水平制定适合猪场的脑脊液免疫方案具有重要意义。

当前，防止猪瘟恶性循环的核心是确保后备猪群和种猪群（含种公猪）猪瘟抗体合格，培育出健康合格的仔猪。本研究为评价母猪胎次对猪瘟疫苗免疫力的影响，我们选择了一个规模化的养猪场，对繁殖母猪一头一头采血，分离血清，用IDEXXELISA猪瘟抗体进行检测。检测试剂盒，结合检测结果，对检测猪场猪瘟抗体不合格的猪进行复种免疫，4周后检测猪瘟抗体，观察母猪胎次对猪瘟合格率的影响抗体。

1 材料与方法

1.1 血清来源及拷贝数采集自福建省规模化养猪场1290头种母猪（经产母猪和后备母猪）。从耳静脉采集血液，并通过常规方法分离血清。最后采用IDEXX ELISA猪瘟抗体试剂盒检测经典猪瘟抗体：该猪场350头猪瘟抗体不合格的种猪随后进行猪瘟疫苗免疫，28- 30天。血清按常规方法分离，及时检测，检测后保存于-20冰箱中。

1.2 试剂与仪器HerdChek猪瘟抗体检测试剂盒（CSFV Ab），批号：99-43220，有效期：2010年12月31日，北京德思源恒生物技术有限公司提供：德国Eppendorf移液器； ExL800酶标仪和ExL50洗板机，美国宝特公司提供；恒温箱水浴锅；离心机等

1.3 操作步骤及判断标准首先，将待测血清和猪瘟抗体检测试剂盒放回室温（18-25），用样品稀释液将待测血清稀释1:2倍，加入ELISA板，然后按照产品说明书要求进行孵育和操作。试验中设2孔阴性血清和2孔阳性血清作为对照。仅当阴性对照的平均OD4500.50和阳性对照的阻断率；当种猪猪瘟抗体阻断率50%时，猪瘟抗体检测结果合格，对猪瘟病毒具有一定的抗性。判断结果如表1所示。参考杜希珍等人的试验结果。在假设的猪瘟阴性和阳性猪场上，认为猪瘟稳定猪场猪瘟抗体合格率在90%以上，当变异系数在25%以内时，不存在猪瘟问题，生产性能也不错。比较好，但对于假设的猪瘟阳性场，一般认为猪瘟抗体合格率在70%以上，变异系数基本处于40%以下的稳定状态。

2 结果与分析

2.1种猪猪瘟抗体检测条件按不同胎次统计母猪猪瘟抗体合格率。呈下降趋势，而变异系数随胎次增加呈上升趋势：其中PO、Pl-P3母猪猪瘟抗体合格率均在80%以上，变异系数控制在40%以内，但从P4开始，猪瘟抗体的合格率处于比较急剧的下降，合格率在50%到60%之间，变异系数基本在40%以上。到P9，抗体通过率仅为52.21%，变异系数达到47.30%。

2.2 兔疫加强后猪群猪瘟抗体检测对加强免疫后的347头猪进行猪瘟抗体检测。加强免疫后种猪合格率提高，共检出不合格种猪347头（期间淘汰3头），加免疫后合格129头，合格率为37.18%。合格率最高为73.81%，其次为Pl-P3经产母猪，为64.18%，P4-P6合格率仅为29.56%，最低为P7-Pl0经产母猪，为21.14%。从变异系数来看，加强免疫后，后备母猪PO变异系数最小，为38.68%，其次为Pl-P3经产母猪，为48.25%。变异系数高达59.25%和68.36%。

3 讨论

种猪是集约化养猪场稳定生产和可持续发展的前提。猪场猪瘟防治工作的好坏直接关系到整个种猪群的健康。如果猪瘟抗体水平低，猪被感染和脱毒的可能性

　　本研究结果表明，猪场后备母猪(PO)和膏年母猪(Pl、P2、P3)的猪瘟抗体合格率均大于70%，变异系数均小于40%，我们认为这样的群体猪瘟免疫合格，处于相对稳定状态；中年母猪(P4、P5、P6)的猪瘟抗体合格率均小于70%，变异系数在40%左右，一般认为这样的群体猪瘟免疫不合格，处于相对不稳定状态；老年母猪(P≥7)的猪瘟抗体合格率均小于70%，变异系数基本大于40%，一般认为这样的群体猪瘟免疫不合格，处于不稳定状态。对猪场猪瘟抗体不合格母猪加强免疫后，后备母猪(PO)的合格率最高，达73.81%( 31/42)，青年母猪(Pl、P2、P3)次之，达64.18%(38/67)，老年母猪最低(P≥7)，仅为21.14%( 26/123)。因此，本研究认为猪场猪瘟抗体的合格率随着胎次的增加而呈现降低的趋势。产生这样现象的原因可能是：后备母猪和青年母猪，免疫器官和免疫系统已经完全发育成熟，猪只对疫苗产生免疫反应的能力较强；对一些高胎次母猪(P≥7)，在猪场生活时间长，接触了猪场中多种病原微生物的共同攻击，如果期间感染了蓝耳病(PRRSV)、圆环病毒病(PCV-2)、伪狂犬病(PRV)等免疫抑制性疾病，会千扰和抑制机体的免疫应答反应；免疫抑制性疾病不仅能引起猪只出现特征性病变，也能通过破坏猪体的免疫系统而使其失去对疫苗的免疫应答功能，李华等 (2001)的研究表明PRRSV感染能严重破坏猪的肺泡巨噬细胞功能，干扰猪瘟疫苗的免疫效果，给母猪的繁殖性能和仔猪生产性能造成严重的影响；司兴奎等 ( 2009)研究表明PCV-2的感染也能在一定程度上抑制机体对猪瘟疫情的体液免疫应答。因此，本研究通过对规模化猪场种猪进行猪瘟抗体的检测，证实了母猪的胎次对猪瘟抗体存在较大的影响，及时淘汰生产性能不稳定的高胎次母猪对维持猪场的稳定有一定的作用，同时也为规模化猪场实行分胎次饲养提供了实验参考。